SoyaNews advertisement placeholder

Комплексный подход к диагностике инфекционных болезней крупного рогатого скота

Доклад директора ГНУ «ВНИВИПФиТ» Олега Верховского на Международном ветеринарном конгрессе в Казани.

В патологии крупного рогатого скота особое место занимают инфекционные болезни, обусловленные вирусами, бактериями, простейшими, паразитами. Они распространены повсеместно и представляют собой серьезную проблему для промышленного животноводства в большинстве стран мира. Особое место занимают вирусы, которые не только вызывают самостоятельные заболевания, но в большинстве случаев играют пусковую роль для развития многих бактериальных инфекций. Наиболее опасные вирусные болезни, такие как: ящур, блютанг, чума, энзоотический лейкоз, инфекционный ринотрахеит/инфекционный пустулезный вульвовагинит (ИРТ/ИПВ), вирусная диарея (ВД), внесены в перечень болезней, методы диагностики и профилактики которых регламентируются стандартами Всемирной организации здравоохранения животных (OIE)*. Другие болезни, такие как: парагрипп-3 (ПГ-3), респираторно-синцитиальная (РСИ), рота-, корона-, и аденовирусная инфекции крупного рогатого скота не входят в перечень болезней OIE, однако представляют серьезную экономическую проблему для промышленного животноводства.

*World Organization of Animal Health (OIE). OIE listed diseases and other diseases of importance to international trade. Manual of Standards for diagnostic test and vaccines for terrestrial animals, 2012.

Большинство инфекционных болезней крупного рогатого скота невозможно распознать только по клиническим признакам и патологоанатомическим изменениям. При их диагностике необходимо учитывать мультифакторную этиологию, клинические проявления, серологическую картину, возможность бессимптомной персистентной инфекции, а также возможное использование живых вакцин. В большинстве случаев необходимо проведение лабораторных исследований для подтверждения диагноза и определения этиологической роли конкретного инфекционного агента. В этой связи наиболее эффективным лабораторным подходом является проведение имеющимися методами (молекулярно-биологическими и иммунологическими) комплекса исследований, направленных как на идентификацию возбудителя (полимеразная цепная реакция – ПЦР; секвенирование генов), так и на выявление специфических антител (реакция нейтрализации – РН, иммуноферментный метод – ИФА и др.). Такой комплексный подход является не- обходимым звеном в системе проведения дальнейших ветеринарно- санитарных мероприятий и основным аргументом для применения в хозяйстве средств специфической профилактики.

Сложно охватить все аспекты комплексного подхода к диагностике инфекционных болезней в одном выступлении, поэтому конкретизируем его примерами двух проблем, этиологическими агентами которых выступают вирусы и микобактерии.

Комплексный подход к диагностике ИРТ/ИПВ и ВД крупного рогатого скота. ИРТ/ИПВ и ВД крупного рогатого скота являются одной из главных проблем молочного и мясного животноводства, для их ликвидации в ряде стран разработаны Национальные программы по искоренению болезней, однако в большинстве случаев меры борьбы основаны на вакцинации, проведении санитарно-гигиенических мероприятий и удалении из стада инфицированных животных. Повсеместно применяемые моно- и ассоциированные вакцины предотвращают появление клинических признаков, снижают количество абортов, сокращают выделение вируса во внешнюю среду, однако не предохраняют от инфицирования. Зачастую бессистемное применение вакцин (прежде всего, живых) в хозяйстве затрудняет интерпретацию результатов исследований, проведенных в одном направлении. В этой связи при подозрении на эти болезни алгоритм комплексных исследований может выглядеть следующим образом:

1) Исследование спермы быков-производителей методом ПЦР* для исключения (или подтверждения) передачи вирусов в процессе осеменения коров.
2) Исследование сыворотки крови безмолозивных телят на наличие противовирусных антител методами ИФА3 и РН4 для исключения возможности (или подтверждения) внутриутробного инфицирования плодов.

*Здесь и далее по тексту – для постановки реакции рекомендуем применять наборы на основе гнездовой ПЦР и ПЦР в режиме «реального времени» (ПЦР-РВ), утвержденные к применению в РФ.

3) При наличии абортов - исследование биоматериала плода методом ПЦР на наличие вирусов.
4) Обследование нетелей и телят:
- выявление специфических антител в сыворотке крови методами РН и ИФА;
- исследование биоматериала (особенно при наличии павших животных) методом ПЦР.
5) Серологические исследования коров-матерей методами ИФА* и РН**, выборочно – исследование их секретов и смывов методом ПЦР на наличие возбудителя.

*Здесь и далее по тексту – для постановки ИФА рекомендуем применять наборы, утвержденные к применению в РФ.
**Здесь и далее по тексту – реакция нейтрализации ставится микрометодом в перевиваемой культуре клеток почки теленка МДВК. За титр антител в сыворотке крови принимают ее предельное разведение, ингибирующее развитие ЦПД в 50% зараженных культур клеток. 

6) При получении положительных результатов ПЦР ( п. 1, 3 - 5) – генетический анализ вирусов с помощью секвенирования их генов*.

*При использовании в хозяйстве живых вакцин проводится сравнительный генетический анализ вирусов, входящих в состав применяемых вакцин, и выделенных патогенов.

7) Сопоставление результатов лабораторных исследований с результатами эпизоотологического обследования и патологоанатомического диагноза.

Комплексный подход к диагностике туберкулеза. При инфицировании млекопитающих M.bovis доминирующим является клеточный иммунный ответ, поэтому при диагностике туберкулеза большое значение имеют методы, направленные на оценку функциональной активности Т-лимфоцитов. К ним относятся внутрикожная туберкулиновая проба (ВТП, основной тест, рекомендованный OIE), реакция бласттрансформации лимфоцитов и «сэндвич»-ИФА на основе моноклональных антител, предназначенный для выявления γ-интерферона в крови инфицированных животных (γ-ИФН ИФА). ВТП характеризуется высокой чувствительностью, однако основным недостатком этого метода является достаточно большой процент ложноположительных реакций, возникающих вследствие перекрестной реактивности между антигенами разных видов микобактерий. γ-ИФН ИФА является одним из наиболее эффективных методов прижизненной диагностики туберкулеза. В настоящее время этот метод наряду с ВТП является узаконенным методом диагностики туберкулеза крупного рогатого скота во многих странах мира. При проведении исследований на территории нашей страны (2000-2004 гг.) была показана высокая эффективность метода и сделано заключение о том, что γ-ИФН ИФА целесообразно использовать как дополнительный метод прижизненной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота в целях дифференциации аллергических реакций на туберкулин. Исследования с помощью метода γ-ИФН ИФА рекомендуется проводить через 7-30 суток после проведения плановой туберкулинизации*.

* А.Х.Найманов, О.А.Верховский, О.А.Савицкая, Н.П.Овдиенко, Ю.Н.Федоров. Определение γ-интерферона для диагностики туберкулеза // Ветеринария, 2004, №6, с.19-22.

Помимо этого для дифференциации M.bovis от M.tuberculosis целесообразно провести исследования методом ПЦР.

Заключение. В настоящее время в арсенале отечественных ветеринарных лабораторий имеются практически все современные и качественные диагностические тест-системы и наборы. Для специалистов необходим творческий подход к проведению комплексных исследований с их помощью, особенно в случае возникновения проблем в хозяйствах, обусловленных патогенами неизвестной этиологии. Результаты комплексных исследований помимо непосредственной постановки окончательного диагноза, могут дать ответ на вопросы, касающиеся степени распространения искомых патогенов в популяции животных, их возможного негативного эффекта на пищевые продукты и организм человека, необходимости проведения ветеринарно-санитарных мероприятий и выбора вакцин.
SoyaNews advertisement placeholder
Теги:

Новости дня